趨化性被描述為細胞向趨化劑的定向遷移。這個過程與趨化作用不同，趨化作用是無向的細胞遷移。當細胞經歷趨化作用時，它們會因某種物質而改變其遷移特性（例如，遷移速度的增加或降低），但不會優選地沿該物質的方向遷移。

　　趨化性是由特定物質（趨化劑）誘導的。該物質可以是趨化因子、趨化因子受體、生長因子或生長因子受體。重要且已充分描述的化學引誘劑是例如趨化因子受體CXCR4及其配體CXCL12、EGFR和EGF，以及CCR7和CCL21。

　　趨化網絡在健康和疾病中發揮著重要作用。一方面，趨化性在許多生理過程中至關重要，例如在炎癥細胞的招募或器官發育過程中。另一方面，趨化過程可以促進癌癥進展，例如在轉移過程中，趨化性的惡意重編程導致細胞侵襲和擴散。

　　開始實驗前需要確認的問題

　　為了正確設置趨化性測定，首先確認以下至關重要的問題：

　　您打算研究哪種細胞類型？

　　了解您感興趣的細胞類型--包括培養基要求和遷移速度--對于后續的檢測計劃至關重要。

　　所分析的細胞類型的遷移速度是多少？

　　雖然有些細胞遷移速度較慢(如腫瘤細胞或成纖維細胞)，但其他類型的細胞(如白細胞)遷移速度非?？?。細胞遷移速度將決定實驗的持續時間和圖像之間所需的間隔。此外，梯度穩定性必須足夠高，以適應實驗的總持續時間。ibidi µ -Slide Chemotaxis適用于慢速和快速遷移細胞的趨化性分析。

　　ibidi µ -Slide Chemotaxis 2D and 3D細胞趨化載玻片

　　最佳培養基是什么？

　　大多數細胞類型在含有胎牛血清(FCS)的培養基中培養。FCS含有許多可以影響細胞遷移的因素（例如酶、激素和生長因子），因此可能會改變趨化性測定的結果。例如，趨化劑對細胞遷移的影響可以被FCS誘導的影響所掩蓋。在開始測定之前逐漸降低培養基中的FCS濃度是克服這個問題的一種方法。此外，還開發了不含FCS的特殊無血清培養基。在開始測定之前，必須測試每種感興趣細胞類型的最佳培養基成分。

　　感興趣的細胞類型的最佳接種密度是多少？

　　接種密度取決于許多細胞因素，例如增殖速率、行為、形狀、上皮或間充質狀態以及對細胞與細胞接觸的依賴性。此外，在確定最佳細胞接種密度時必須考慮實驗持續時間。為了有足夠的可追蹤細胞，開始實驗時密度不能太低。在實驗結束時，單細胞應該是清晰可定義和可追蹤的?？紤]到這些因素，在開始趨化性測定之前，應分別確定每種細胞類型的最佳接種密度。

　　應該進行多少次實驗？

　　通常，三到五次重復實驗足以從趨化組和相應的對照組創建重要數據。每個實驗應包含20-40個單細胞的跟蹤數據，這可以使用低放大倍率顯微鏡物鏡（例如5倍或10倍）來實現。

　　我應該進行2D或3D趨化性分析嗎？

　　大多數細胞自然嵌入3D矩陣中。在趨化性測定過程中在2D環境中培養它們可能會改變它們的行為和遷移能力。為了克服這個問題，可以將細胞嵌入模仿其自然環境的3D基質中，例如膠原蛋白、基質膠或其他水凝膠。ibidi µ -Slide Chemotaxis非常適合2D和3D實驗。

　　3D趨化性測定的優點：

　　大多數細胞類型更類似于體內的環境-高度明確的環境（例如纖維或基質）

　　可以使用懸浮細胞進行趨化性測定

　　3D趨化性測定的局限性:

　　凝膠處理困難；實驗過程中需要控制更多參數

　　細胞可能附著在2D表面，從而創造2.5D條件

　　細胞可能在3D跟蹤過程中失焦

　　有關2D和3D趨化性測定的更多信息，請參閱以下實驗應用說明：

　　* 3D Chemotaxis Protocol for Non-Adherent Cells in a Gel Matrix

　　* Immunofluorescence Staining of HUVEC in 3D in the μ-Slide Chemotaxis

　　* 細胞趨化載玻片趨化性試驗-如何自動跟蹤細胞運動軌跡

　　* 可視細胞趨化實驗的工作流程

　　實驗中必須包括哪些對照？

　　為了正確分析趨化性實驗，至關重要的是包括不含任何趨化劑的陰性對照 (-/-)，以及整個室中含有趨化劑的陽性對照 (+/+)。

　　使用 ibidi µ-Slide Chemotaxis 時，由于梯度以外的所有條件都是對稱的，因此需要最少的控制測量。這允許相互獨立地分析趨化性和趨化運動。在該實例中，趨化劑誘導癌細胞的趨化性和趨化運動。

包括實驗組(+/-)、陽性(+/+)和陰性(-/-)對照組的趨化分析的實驗設置(上圖)和數據圖(下圖)。